YLS-Q9G靜脈可視小鼠尾注固定器使用方法

YLS-Q9G靜脈可視小鼠尾注固定器使用方法

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1. 連接

   ①接通電源：將電源適配器分別連接電源和儀器上，接通后主機面板處有綠色指示燈亮。

   ②連接腳踏開關：將腳踏開關插頭插接在主機箱上。

   （注：腳踏開關不連接，上壓塊無法吸合。）

   ③連接鼠尾透視燈：將L型鼠尾托板上的燈線插頭插在主機箱相應的插座上，按動右側面上的黃色按鈕，黃色燈應亮。

   二、裝鼠

   ①快速裝鼠筒的使用：

   快速裝鼠筒一改過去那種小鼠鉆入式的裝鼠方式，（小鼠鉆入式的裝鼠方式**使用還可以，動物在不知的情況下，很容易進入，但動物經過幾次后知道進入的不適感覺，再讓其進入就較困難了。）快速裝鼠筒是后拉尾式裝鼠方式，箕型的鼠筒前端能順利地將鼠拉入筒內，為了避免鼠在筒內滾轉身體，筒內安裝了腹部限位塊，能有效地限制小鼠身體在筒內翻轉，小鼠被拉入筒后，可用前堵頭將其堵在里面，前堵頭的孔是根據小鼠頭骨的生理曲線設計的，能有效地控制鼠的頭部，但又不影響正常的呼吸，同時還能讓小鼠的前肢找到一個舒適的位置，堵頭的固定位置應以動物不能自由活動但又不影響動物肺部擴張，正常呼吸為準（通過透明的有機玻璃可觀察調整）。

   ②裝好鼠的筒放置于主機上面板的滑槽上，鼠筒應側放（因靜脈血管在鼠尾的兩側），定位銷進入定位孔，鼠尾通過開口的檔板，將其放置在鼠尾擠壓板下板的溝槽里，按動右側面的黃色按鈕，黃色燈亮，觀察鼠尾血管是否擺正，再按一下黃色按鈕，關閉黃燈，隨后將擠壓上板右轉 90°壓下，（按下轉軸位置，垂直向下用力）直到聽到清脆的吸合聲才可松手，此時鼠尾已被壓住，按壓時應緩慢加力，為讓鼠尾根部的血液，有時間擠壓到鼠尾的梢部，在下壓的同時黃光燈自動點亮，這時可以根據黃光透射血管的情況調整黃光亮度旋鈕，使血管達到*清楚（環境的亮度變化會影響血管的顯現情況，建議在較暗的室內操作，應避開強光直射）。

   ③注射位置的調整：不管使用多大的小鼠均應從鼠尾部的下1／3處進針，這樣逐漸從下向上打可避開打過的針眼出現漏液現象。因使用動物的品系、大小不同，尾長度也不同，這樣就需要調整注射時的位置，其方法是松開左邊金屬旋鈕，拉動L型鼠尾托板至合適位置后旋緊即可。

   ④放大鏡的使用：放大鏡是為了能更清楚地看到尾靜脈血管和針頭進入的情況（如視力很好也可拆掉不用），放大鏡能進行角度位置的調整，可以適合不同視角的人，放大鏡支架的上螺絲松開后可以改變放大鏡的角度，松開下螺絲可以改變入視角的角度，支架轉動的中軸可以在裝鼠時放大鏡暫時離開，總之放大鏡的合理設計既方便了使用又不會影響到其它操作。

   ⑤注射：注射使用的針頭應在5號針以下，4.5或4號較為合適，過粗的針對血管損傷過大，用后止血困難。目前也有用頭皮針后接1毫升注射器用的。這還是為了看回血情況來判斷是否進入血管，不管用什么樣的針，重要的一點是能看到血管，同時又能看到針在哪里了，這樣注射就很容易了，針頭進入血管后針頭左右擺動一下看血管是否跟著動，這是判斷進入血管的*好方法。

   確定針進入血管后，踏動腳踏開關，上擠壓板上行左轉90°打開，這時就可以將**推入靜脈，推入時應緩慢，避免動物出現充血性心衰，每次注射量不超過0.2ml。注射完成后應用棉球按壓針孔處半分鐘以上，避免皮下出血或藥液回流，影響下次注射，備用鼠筒是為了提高效率輪換使用的。（如果動物樣本大也可多購鼠筒）

   注意事項：                                                     

       

   ① 動物在被裝筒捉持時會有應激反應，糞尿過多，應及時清理上板面和鼠筒內的糞便。

   ②儀器不用時應及時拔掉電源，避免儀器過熱損壞。

   儀器不可隨意拆卸，如有問題請及時與廠家聯系。

   電話：021-54172191

    

    

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